banner

Новости

Dec 17, 2023

Мультимодальная перепись клеток и атлас первичной моторной коры млекопитающих.

Nature, том 598, страницы 86–102 (2021 г.) Процитировать эту статью

71 тыс. доступов

119 цитат

791 Альтметрика

Подробности о метриках

Здесь мы сообщаем о создании мультимодальной переписи клеток и атласа первичной моторной коры млекопитающих в качестве исходного продукта сети переписи клеток BRAIN Initiative (BICCN). Это было достигнуто за счет скоординированного крупномасштабного анализа одноклеточных транскриптомов, доступности хроматина, метиломов ДНК, пространственно разрешенных одноклеточных транскриптомов, морфологических и электрофизиологических свойств и картирования ввода-вывода с клеточным разрешением, интегрированных с помощью кросс-модального вычислительного анализа. Наши результаты расширяют коллективные знания и понимание организации типов клеток мозга1,2,3,4,5. Во-первых, наше исследование выявило единый молекулярно-генетический ландшафт типов корковых клеток, который объединяет их транскриптом, открытый хроматин и карты метилирования ДНК. Во-вторых, межвидовой анализ позволяет достичь консенсусной таксономии транскриптомных типов и их иерархической организации, которая сохраняется от мыши до мартышки и человека. В-третьих, транскриптомика одиночных клеток in situ обеспечивает пространственно разрешенный атлас клеточных типов моторной коры. В-четвертых, кросс-модальный анализ предоставляет убедительные доказательства транскриптомной, эпигеномной и генной регуляторной основы фенотипов нейронов, таких как их физиологические и анатомические свойства, демонстрируя биологическую достоверность и геномную основу типов нейронов. Кроме того, мы представляем обширный набор генетических инструментов для нацеливания на типы глутаматергических нейронов с целью связать их молекулярную идентичность и идентичность развития с их функцией цепи. В совокупности наши результаты создают объединяющую и механистическую структуру организации типов нейрональных клеток, которая объединяет многослойную молекулярно-генетическую и пространственную информацию с многогранными фенотипическими свойствами.

Уникальный среди органов тела, человеческий мозг представляет собой обширную сеть блоков обработки информации, состоящую из миллиардов нейронов, соединенных между собой через триллионы синапсов. Разнообразные нейрональные и ненейрональные клетки демонстрируют широкий спектр молекулярных, анатомических и физиологических свойств, которые вместе формируют динамику сети и вычисления, лежащие в основе умственной деятельности и поведения. Мозговые сети самособираются в процессе развития, используя геномную информацию, сформированную в ходе эволюции, для создания набора стереотипных сетевых каркасов, которые во многом идентичны у разных людей; жизненный опыт затем настраивает нейронные цепи в каждом человеке. Важным шагом на пути к пониманию архитектуры, развития, функций и заболеваний мозга является обнаружение и картирование составляющих его элементов нейронов и других типов клеток.

Понятие «типа нейрона», обладающего сходными свойствами среди его членов, как основной единицы мозговых цепей, было важной концепцией на протяжении более столетия; однако строгие и количественные определения остаются на удивление неуловимыми1,2,3,4,5. Нейроны удивительно сложны и неоднородны как локально, так и в своих дальних аксональных проекциях, которые могут охватывать весь мозг и соединяться со многими целевыми областями. Многие традиционные методы анализируют один нейрон за раз и часто неполностью изучают только один или два клеточных фенотипа (например, отсутствие ветвей аксонов в отдаленных мишенях). В результате, несмотря на значительные достижения последних десятилетий, фенотипический анализ типов нейронов остается строго ограниченным по разрешению, надежности, полноте и пропускной способности. Сложности во взаимоотношениях между различными клеточными фенотипами (мультимодальное соответствие) вызвали давние дебаты по классификации нейронов6.

Технологии геномики отдельных клеток обеспечивают беспрецедентное разрешение и производительность для измерения транскриптомных и эпигеномных профилей отдельных клеток и быстро повлияли на многие области биологии, включая нейробиологию, обещая катализировать переход от фенотипического описания и классификации к механистической и объяснительной молекулярно-генетической структуре для клеточные основы организации мозга. Применение секвенирования одноклеточной РНК (scRNA-seq) к неокортексу и другим областям мозга выявило сложную, но понятную иерархическую организацию типов транскриптомных клеток, которая в целом согласуется с знаниями, накопленными за десятилетия анатомических, физиологических исследований и исследований развития, но с непревзойденный уровень детализации7,8,9,10,11. Аналогичным образом, исследования метилирования одноклеточной ДНК и доступности хроматина начали выявлять эпигенетические ландшафты всего генома, специфичные для каждого типа клеток, и сети регуляции генов в мозге12,13,14,15. Примечательно, что масштабируемость и высокая информативность этих методов позволяют провести комплексный количественный анализ и классификацию всех типов клеток, которые легко применимы к тканям мозга разных видов и предоставляют количественные средства сравнительного анализа16,17.

 4) (e) between pairs of species. Asterisks denote non-neuronal populations that were under-sampled in human. DE, differentially expressed. f, Venn diagrams of shared differentially expressed genes between species for L2/3 IT and L5 ET subclasses. g, Conserved and species-enriched differentially expressed genes for all glutamatergic subclasses shown in an expression heat map. h, Conserved markers of GABAergic neuron types across three species. Data may be viewed at NeMO Analytics. Marmoset silhouette is adapted from www.phylopic.org (public domain). Exc, excitatory; max, maximum; astro, astrocyte; endo, endothelial cell; oligo, oligodencrocyte; OPC, oligodendrocyte progenitor cell; PVM, perivascular macrophage./p> 0.7 classification power. Markers were used as input to guide alignment and anchor-finding during integration steps. For full methods see ref. 38. Code for generating Figs. 1b–h, 3, Extended Data Fig. 2 is available at http://data.nemoarchive.org/publication_release/Lein_2020_M1_study_analysis/Transcriptomics/flagship/. Analysis was performed in RStudio using R version 3.5.3, R packages: Seurat 3.1.1, ggplot2 3.2.1 and scrattch.hicat 0.0.22./p> 0.1 (~95th percentile of the whole matrix) as a threshold to associate a cluster with a module. Similarly, we associated each module with accessible elements using the basis matrix. For each element and each module, we derived a basis coefficient score, which represents the accessible signal contributed by all clusters in the defined module./p> 2). To perform the motif enrichment analysis, we used known motifs from the JASPAR 2020 database86 and the subclass specific hypo-CG-DMR identified in Yao et al.37. The AME software from the MEME suite (v5.1.1)87 was used to identify significant motif enrichment (adjusted P-value < 10−3, odds ratio > 1.3) using default parameters and the same background region set as described37. All genes in Extended Data Fig. 7 were both significantly expressed and had their motif enriched in at least one of the subclasses./p> 10. In module M1, de novo motif analysis of putative enhancers showed enrichment of sequence motifs recognized by TFs CTCF and MEF2. CTCF is a widely expressed DNA binding protein with a well-established role in transcriptional insulation and chromatin organization, but recently it was also reported that CTCF can promote neurogenesis by binding to promoters and enhancers of related genes. In the L2/3 IT selective module M2, putative enhancers were enriched for the binding motif for Zinc-finger transcription factor EGR, a known master transcriptional regulator of excitatory neurons89. In the Pvalb selective module M8, putative enhancers were enriched for sequence motifs recognized by the MADS factor MEF2, which is associated with regulating cortical inhibitory and excitatory synapses and behaviours relevant to neurodevelopmental disorders90. d, Heatmap showing the weight of each joint cell cluster in each module, derived from the coefficient matrix. The values of each column are scaled (0–1)./p>

ДЕЛИТЬСЯ